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17. REZEPTE FÜR DIE MIKROCHEMISCHEN NACHWEISE
Barytwasser: Ba(0H)2 gesättigt in Wasser.
Diphenylcarbozon: 1%ige Lösung in Ethanol.
Jod-Jodkal1um-Lösung: 2,5g Jod und 1,7g Kaliumjodid in 100ml
Wasser lösen.
Kaliumthiocyanat-Lösung (ca. 1N): 9,7g KSCN in 100ml Wasser
lösen.
Königswasser: 3 Vol.-Teile konz. HCl und 1 Vol.-Teil konz.
HNO3 vor Gebrauch mischen.
Phloroglucin-Reagenz: 1g Phloroglucin in 50ml Alkhol lösen.
25cm3 konz. HCl hinzufügen. (Die Lösung
zersetzt sich nach einiger Zeit unter
Licht- und Sauerstoffeinfluß).
Protein-Nachweis: Probe in Kapillare, die mit einem Zellstoff-
pfropfen, der mit 4-Dimethylamino-benzalde-
hyd, gesättigt in konz. Essigsäure, getränkt
ist, verschlossen wird. Die Probe wird bis
zum Verkohlen erhitzt und bei Anwesenheit
von Eiweißen färbt sich der Pfropfen mehr
oder weniger stark rot bis violett ein186).
Tripelnitrit-Reagenz: Bleiacetat (Pb(CH3C00)2) gesättigt in
Wasser.
Kaliumnitrit (KNO2)
Kupferacetat (Cu(CH3C00)2) gesättigt in
Wasser.
DC für Proteine: Probe in Glühröhrchen mit 6N HCl versetzen.
Röhrchen abschmelzen und für 72 Stunden bei
etwa 110°C in den Trockenschrank stellen.
Anschließende Neutralisation mit H2O und
BaC03 auf pH 7. Filtration durch Filtrier-
papier, um verkohlte Anteile zu entfernen.
Eindampfen des Filtrats und anschließendes
Auftragen auf DC-Platten (Kieselgel).
Als Laufmittel dient Phenol/H20 (3:1) oder
n-Butanol/E1sessig/H20 (4:1:1). Platten mit
Ninhydrin-Spray besprühen und ca. 10 Minuten
bei 110°C in den Trockenschrank legen. Es
entstehen violette bzw. gelbe Flecken187).
186> SCHRAMM 1989, S.206
187> REICHLIN-MINORETTI 1983, S.60ff.
17. REZEPTE FÜR DIE MIKROCHEMISCHEN NACHWEISE
Barytwasser: Ba(0H)2 gesättigt in Wasser.
Diphenylcarbozon: 1%ige Lösung in Ethanol.
Jod-Jodkal1um-Lösung: 2,5g Jod und 1,7g Kaliumjodid in 100ml
Wasser lösen.
Kaliumthiocyanat-Lösung (ca. 1N): 9,7g KSCN in 100ml Wasser
lösen.
Königswasser: 3 Vol.-Teile konz. HCl und 1 Vol.-Teil konz.
HNO3 vor Gebrauch mischen.
Phloroglucin-Reagenz: 1g Phloroglucin in 50ml Alkhol lösen.
25cm3 konz. HCl hinzufügen. (Die Lösung
zersetzt sich nach einiger Zeit unter
Licht- und Sauerstoffeinfluß).
Protein-Nachweis: Probe in Kapillare, die mit einem Zellstoff-
pfropfen, der mit 4-Dimethylamino-benzalde-
hyd, gesättigt in konz. Essigsäure, getränkt
ist, verschlossen wird. Die Probe wird bis
zum Verkohlen erhitzt und bei Anwesenheit
von Eiweißen färbt sich der Pfropfen mehr
oder weniger stark rot bis violett ein186).
Tripelnitrit-Reagenz: Bleiacetat (Pb(CH3C00)2) gesättigt in
Wasser.
Kaliumnitrit (KNO2)
Kupferacetat (Cu(CH3C00)2) gesättigt in
Wasser.
DC für Proteine: Probe in Glühröhrchen mit 6N HCl versetzen.
Röhrchen abschmelzen und für 72 Stunden bei
etwa 110°C in den Trockenschrank stellen.
Anschließende Neutralisation mit H2O und
BaC03 auf pH 7. Filtration durch Filtrier-
papier, um verkohlte Anteile zu entfernen.
Eindampfen des Filtrats und anschließendes
Auftragen auf DC-Platten (Kieselgel).
Als Laufmittel dient Phenol/H20 (3:1) oder
n-Butanol/E1sessig/H20 (4:1:1). Platten mit
Ninhydrin-Spray besprühen und ca. 10 Minuten
bei 110°C in den Trockenschrank legen. Es
entstehen violette bzw. gelbe Flecken187).
186> SCHRAMM 1989, S.206
187> REICHLIN-MINORETTI 1983, S.60ff.